当前位置:首页 > 科研成果库

基因编辑脱靶检测:我们还没摸透CRISPR剪刀的刃口

2026-10-19 03:40:10小研科研成果库10

去年深秋在南京紫金山下的实验室,我见过刚跑完三代测序的凝胶图——条带歪歪扭扭,本该亮在靶位点的带型旁边,多了两团模糊的影子。那是我们做了三个月的小鼠胚胎编辑样本。本来预期的单碱基替换,偏偏在非目标区段切了两刀。没人敢直接往下做移植。

那些被漏掉的剪切点,从来不是小问题

早期做基因编辑的人,大多都有过类似的经历。一开始我们总觉得,脱靶就是剪刀找了和靶序列长得像的地方下了手——毕竟Cas酶识别靶序列靠的是碱基互补配对,差几个匹配不上,总该不会切吧?

这个想法骗了我们好多年。

传统的同源序列预测模型,最多能覆盖不到30%的实际剪切位点。2015年前后整个领域都在靠计算机列潜在脱靶位点,然后挨个扩增测序,结果有课题组对着小鼠全基因组做无偏好检测的时候才发现,超过七成的实际剪切位点,和靶序列的同源性低到连预测软件的阈值都够不上。

说起来好笑,我们前两年还信过某款商业软件的预测报告,拿着它列的12个潜在位点挨个测,测完发现样本里有三个剪切点根本不在列表里。当时整个实验室的人对着测序数据愣了半小时——这相当于你拿个筛子捞鱼,捞了半天发现筛子眼全在水外面。

这些漏掉的位点从来不是无关紧要的噪音。2021年有个临床I期的基因编辑项目,本来用在造血干细胞上的gRNA,被发现会在一个抑癌基因的内含子区域产生低频率的剪切,直接导致整个项目暂停了六个月。你永远不知道那个藏在非编码区的剪切点,会不会刚好碰掉一个调控元件,会不会在几年后诱导出癌变。

CRISPR-Cas9非同源剪切位点分布示意图CRISPR-Cas9非同源剪切位点分布示意图

从“找相似”到“抓现行”,方法绕了十年弯路

意识到预测模型靠不住之后,整个领域花了差不多五年时间,把检测思路从“按图索骥”改成了“无偏好抓现行”。

最早出来的GUIDE-seq算是个转折点。它靠把一种短的双链寡核苷酸转进细胞,只要基因组里出现了双链断裂,这个寡核苷酸就会插进去,最后把所有插了标记的位点捞出来测序——等于给所有剪切点装了个摄像头。

但这个方法也有致命的毛病。

寡核苷酸要转进细胞本身就是个门槛。对于细胞系样本还好,转染效率能到70%以上,测出来的结果基本靠谱。要是换成体内直接编辑的组织,比如小鼠的肝脏、大脑,寡核苷酸根本递不进去,摄像头等于白装。我们去年用GUIDE-seq测细胞系样本,同一种gRNA找出来17个剪切位点,换成体内注射的小鼠肝脏样本,只找到了4个。一开始还以为是体内编辑效率低,后来才发现是肝细胞的转染效率不到5%——大半的剪切点根本没被标记上。

后来又出来了CIRCLE-seq、Digenome-seq这些体外检测方法,把基因组提出来打断,在试管里加Cas酶和gRNA,看哪些片段被切了。但体外的基因组是裸露的,和体内折叠成染色质的状态完全不一样,很多位点在体内被组蛋白挡住,根本碰不到,体外测出来的脱靶谱,到了体内直接打对折。

现在大家普遍更倾向于用全基因组深度测序做验证。基于全基因组测序的无偏好检测,现在已经能做到单碱基分辨率下的结构变异识别,不需要任何标记,不管是细胞样本还是组织样本,只要提了基因组就能测。

但贵。

我们上个月测一个临床前的样本,30X的全基因组测序跑出来什么脱靶都没发现,后来加到200X的深度,才在一个内含子区域找到了一个频率只有1.2%的剪切位点。那一笔测序费,够买三个月的分子生物学试剂。

不同基因编辑脱靶检测方法的适用场景对比图不同基因编辑脱靶检测方法的适用场景对比图

我们现在能测出所有脱靶吗?显然不能

很多人觉得现在技术成熟了,只要测够深的测序,就能把所有脱靶都找出来。真不是。

最早的Cas9介导的双链断裂脱靶,现在的方法基本能覆盖个七七八八。但这两年火起来的单碱基编辑、Prime编辑,根本不产生双链断裂,之前的那些找双链断裂的方法,全没用。

比如胞嘧啶单碱基编辑器CBE,之前有研究发现它会在RNA水平产生大量的随机脱氨基突变,还有的会在基因组里产生低频率的单碱基替换,这些变化不会形成双链断裂,之前的检测方法根本抓不到。你要是只测DNA的双链断裂位点,等于只查了小偷撬锁的痕迹,人家翻窗户进来你根本没看见。

更麻烦的是,脱靶的风险从来不是静态的。gRNA的序列、Cas酶的浓度、编辑的组织类型、甚至个体的基因组差异,都会改变最终的脱靶谱。

我们之前和医院合作过一个T细胞编辑的临床前项目,用同一个gRNA在三个健康供体的T细胞里做编辑,最后测出来的脱靶位点重合率不到40%。其中一个供体的基因组里刚好有个SNP,和gRNA的部分序列刚好互补,凭空多出来一个之前从来没见过的剪切位点。当时整个项目组都傻了——这意味着你在实验室用细胞系测出来的脱靶谱,到了不同病人身上,完全可能是另一套。

现在FDA对于基因编辑的临床前申报,已经要求必须用至少两种无偏好的脱靶检测方法,不能只靠计算机预测。但到底要测到什么深度才算够?测到的脱靶位点在非编码区,到底要不要紧?如果那个位点刚好是个还没被注释的增强子,会不会导致长期的基因表达异常?这些问题现在都没有标准答案。

说实在的,我现在每次拿到新的脱靶检测报告,都不会像前几年那样直接松口气。总觉得还有什么东西藏在数据后面——毕竟我们现在能看到的,只是剪刀切出来的明面上的口子,那些没被切开的、只是稍微碰了一下的位点,会不会在几个月甚至几年之后出问题?没人知道。

上个月去上海开学术会,听一个老师讲他们新开发的高保真Cas变体,脱靶率比野生型低了两个数量级。我当时在底下记笔记,突然想起三年前在南京实验室对着凝胶图愣神的那个下午。

其实路还长。

但至少我们现在知道,要找的不是那几个看得见的条带,是整个基因组里所有可能被碰到的地方。